La cayalyse enzymatique (التحفيز الإنزيمي) exige des conditions optimales comme le pH et les concentrations en substrats. La cinétique varie entre enzymes michaeliennes et enzymes allostériques. L'effet des inhibiteurs réversibles est variable d'un inhibiteur à l'autre. Ici, on donne l'exemple de la béta-galactosidase
French | Arabic | English |
Enzymes, inhibiteurs | إنزيمات، مثبطات | Enzymes, Inhibitors |
Catalyse enzymatique | التحفيز الإنزيمي | Enzyme catalysis |
-- Réponse 1
L'effet du pH sur l'activité d'une enzyme est démontré dans le graphique ci-contre:
Comment explique-t-on l'effet du pH sur l'activité de l'enzyme?
Le pH optimal varie beaucoup d'une enzyme à l'autre. Quelles chaînes latérales retrouverait-on au site actif d'enzymes dont le pH optimal est de: a) pH 4, b) pH 11
-- Réponse 2
On étudie la cinétique de deux enzymes (A et B). A partir des
données suivantes, determiner le type d'enzyme (enzyme michaelienne ou allosterique) et expliquez l'allure des courbes représentant la vitesse (v) en fonction de la concentration du substrat (S).
[S] (x 10 3 M) | v (enzyme A) (µmol/ min) | v (enzyme B) (µmol/ min) |
0,00 | 0,00 | 0,00 |
0,50 | 8,80 | 0,30 |
1,00 | 14,00 | 1,00 |
2,00 | 19,00 | 4,70 |
3,00 | 21,50 | 12,40 |
4,00 | 22,80 | 19,00 |
5,00 | 22,30 | 21,80 |
6,00 | 23,50 | 22,80 |
8,00 | 23,60 | 23,30 |
-- Réponse brève
Correction détaillée dans le livre 'Sciences de la vie. Protéines
et Enzymes' avec DVD, Baaziz, 2013, pages 139-144
A pH 7,7 et 25°C, les cinétiques d'hydrolyse de l'o-nitrophényl-galactoside par la béta-galactosidase de la bactérie Escherichia coli ont été étudiés en absence ou en présence de l'un des inhibiteurs suivants: o-nitrophényl-béta-D-thiogalactoside (ONPTG), maltose et mélibiose. Les mesures de vitesses initiales (v) pour chacune de ces expériences sont données dans le tableau suivant comme la variation de l'absorbance à 410 nm par minute.
(S) en M | v sans inhibiteur | v (+ ONPTG 3x10-4 M) | v0 5+ maltose 0,26 M) | v (+ mélibiose 0,17M) |
2,5 x 10-5 | 0,033 | 0,018 | 0,0165 | 0,027 |
5,0 x 10-5 | 0,055 | 0,023 | 0,0275 | 0,041 |
10,0 x 10-5 | 0,0825 | 0,055 | 0,041 | 0,055 |
25,0 x 10-5 | 0,118 | 0,091 | 0,059 | 0,069 |
50,0 x 10-5 | 0,138 | 0,118 | 0,059 | 0,075 |
100,0x 10-5 | 0,150 | 0,138 | 0,075 | 0,079 |
1/ A partir des représentations graphiques de Lineweaver-Burk (1/v = f(1/(S)), tracées en absence ou en présence de l'inhibiteur (I), préciser les types d'inhibition exercés exercées par les trois inhibiteurs vis à vis du substrat (S = ONPG). Calculer les constantes cinétiques Vmax (en absence d'inhibiteur), Vmax' (en présence d'inhibiteur), Km (en absence d'inhibiteur) et et Km' (en présence d'inhibiteur). Discuter l'effet de chaque inhibiteur sur l'activité enzymatique et la liaison entre l'enzyme (E), le substrat (S) et l'inhibiteur (I).
1)من خلال رسم منحنيات Linweaver-Burk (1/v = f(1/(S))، بغياب المثبطات (I) و بحضورها، حدد نوعية المثبطات الثلاثة لإنزيم بيتا كلكتوزيداز عند بكتيريا E-coli مع احتساب الثوابت الحركية مثل السرعة القصوى بغياب المثبط(Vmax) وبحضوره (Vmax') وثابت ميكايلس بغياب المثبط (Km) وبحضوره (Km). ناقش وقع كل مثبط على نشاط إنزيم بيتا كلكتوزيداز (béta-galactosidase) والعلاقة الترابطية بين الإنزيم (E) و مادة الأساس (S) و المثبط (I).
2/ Calculer les constantes d'inhibition pour chaque inhibiteur (Ki et Ki') et comparer l'affinité de l'enzyme pour chaque inhibiteur.
2) احتسب ثابت أو ثوابت الإعاقة لكل مثبط (Ki و Ki) و قارن ألفة الإنزيم لكل مثبط.
Liens utiles: Glucokinase, Hexokinase, béta-galactosidase et phospholipase A2. Examen (pdf)
Réponses brèves
Catalyse enzymatique. Réponse à la question 1 -- Question 1
1/ Le fait que le pH optimal de l'enzyme soit à pH 8,0 suggère
que l'état d'ionisation (ou de protonation) de résidus d'acide
aminé du centre actif de l'enzyme est important pour l'activité
de cette dernière. Par exemple, à pH inférieur à
8, la protonation de la chaîne latérale d'un résidu
histidine (pKaR = 6) pourrait altérer le mécanisme de catalyse
enzymatique soit directement au sein du site actif, soit indirectement
en induisant un changement conformationnel de la protéine.
à un pH supérieur à 8, la déprotonation de
groupements précis (e.g chaîne latérale de Tyr ou
Lys; groupe amino-terminal) pourrait avoir la même conséquence
sur l'activité enzymatique.
2/ a) Pour une enzyme dont le pH optimal est de 4, on peut
supposer que la partie ascendante de la courbe pourrait être attribuable
a l'ionisation du groupe carboxyl de la chaine laterale d'un Asp, ou du
groupe alpha-carboxyl de l'acide amine C-terminal. Pour la partie descendante,
elle pourrait être le resultat de la deprotonation de l'His ou de
l'ionisation de la Glu.
b) Pour une enzyme dont le pH optimal est de 11, la portion
ascendante de la courbe pourrait être attribuable à la déprotonation
du groupe amino de la chaine laterale de Lys. Quant a la partie descendante
de la courbe, elle pourrait être la conséquence de la deprotonation
de Arg.
Catalyse
enzymatique. Réponse à la question 2 -- Question
2
On doit d'abord tracer le graphe de la vitesse de la réaction en fonction
de la concentration en substrat (voir ci dessous).
D'après
l'allure du graphe, A est une enzyme ordinaire michaelienne qui suit la cinétique de Michaelis-Menten. La vitesse initiale de la réaction catalysée par l'enzyme A ne dépend que de la concentration du substrat. La vitesse maximale étant atteinte en présence d'un excès de substrat.
Quant à l'enzyme B, on peut conclure qu'elle est une enzyme allostérique.
En effet, à des concentrations peu élevées de substrat,
l'enzyme (qui possède plusieurs sites de liaison du substrat) adopte
une conformation telle que son affinité pour le substrat est faible.
La vitesse de réaction est alors lente. Par contre, la liaison
d'une molécule de substrat à l'enzyme induit un changement
conformationnel chez cette protéine qui a pour conséquence
d'augmenter l'affinité des autres sites envers le substrat. Plus
la concentration en substrat augmente, plus le nombre de sites à
haute affinité pour le substrat augmente. Ceci conduit à
une vitesse élevée de la réaction catalysée
par l'enzyme B.
Catalyse enzymatique. Réponse à la question 3-- Question 3
- A partir de la courbe 1, l'ONPTG est inhibiteur compétitif vis à vis de l'ONPG. Il ne peut former que des complexe binaires avec la béta-galactosidase (enzyme) (absence de complexe ternaires --> voir page 84 du livre 'Sciences de la vie. Protéines et Enzymes', 2013).
-
A partir de la courbe 2, le maltose est inhibiteur non compétitif vis àvis de l'ONPG. Avec l'enzyme (béta-galactosidase) et le substrat, Il forme un complexe ternaire non productif. La Vmax est affectée --> voir page 95 du livre 'Sciences de la vie. Protéines et Enzymes', 2013).
- A partir de la courbe 3, le mélibiose est inhibiteur incompétitif vis à vis de l'ONPG). Il ne peut se fixer que sur l'enzyme (béta-galactosidase) préalablement complexée avec le substrat. Il est dit 'inhibiteur conditionnel (sa fixation sur l'enzyme est conditionnée par la fixation du substrat
d'abord) -> voir page 89 du livre 'Sciences de la vie. Protéines et Enzymes', 2013).
2/ ONPTG: Ki = 3 x 10-4M
Maltose: Ki = 0,26 M (= Ki')
Mélibiose: Ki' = 0,17 M
voir page 144 du livre 'Sciences de la vie. Protéines et Enzymes', 2013).
LIENS UTILES
- Mécanisme de catalyse à plusieurs substrats. Moyens d'étude
- Mécanisme de catalyse ping-pong
- Mécanisme de catalyse au hasard fixation indépendante
- Mécanisme de catalyse au hasard fixation dépendante
- Enzymologie-enzymes (exercices)
- QCM-Enzymes. Structure et fonction (bases)
-
Hexokinase
- Coenzyme A transférase
- Enzymes, métabolisme. Exercices
- Enzymes, Km et Vmax. Exercices
- Amine oxydase
- Inhibiteurs. Applications
- QCM-Inhibiteurs-1
- QCM-Inhibiteurs-2.
- Phospholipase, Allostérie
- Citrate synthétase, Peroxydase (Examen)
- Chélatase, Aspartate transcarbamylase. Examen
- Enzymologie. Examen 4
- Enzymologie. Examen 5
- Polyphénoloxydase.
Examen S5
- Phospholipase A2.Examen
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