STRUCTURE TRIDIMENSIONNELLE DU LYSOZYME

Ce projet d'étude de la relation Structure-Fonction des molécules est consacré au lysozyme sous sa forme complexée à un inhibiteur (Code 1JEF). Une copie est disponible sur votre CD (dans le répertoire MOLECULES DATA (CD)).

Chaque étudiant choisira la protéine qu'il désire étudier à l'aide du programme RasTop. En exploitant les connaissances de base sur la protéine, l'étudiant préparera un compte-rendu de 4-5 pages décrivant en détail la structure de la molécule. Un index contenant au moins 3-6 images RasTop peut être joint au compte-rendu. Joindre au compte-rendu une copie des informations de base sur la molécule sujet d'étude ainsi que des références bibliographiques. Les images peuvent être fourni sous format zip et envoyées par E-mail à votre Professeur.
Le compte-rendu doit fournir les informations suivantes:
1/ Information de base sur la protéine (fonction de la protéine, son rôle, lieux de synthèse et lieu d'activité,...).
2/ structure de la protéine (nombre de sous-unités, structure secondaire,...).
3/interactions moléculaires importantes dans la fonction de la protéine (images RasTop à l'appui). Les interactions concernent, entre autres, les liaisons hydrogène et électrostatique et les interactions hydrophobes.

Pour le cas du lysozyme l'Etudiant trouvera les meilleures illustrations visualisant toute l'information sur cette enzyme. Plusieurs questions peuvent être posées dont:
1/ Combien de cystéines contient le lysozyme ?
2/ Combien de ponts dissulfures contient la molécules. Entre quels acides aminés sont ils formés?
3/Identifier les acides aminés qui entourent le substrat logé dans le site actif
4/ Mesurer les distances entre le lieux de coupure du substrat et les acides aminés Glu35 et Asp52

Quelques informations sur le lysozyme.

biotechnologies et environnement
www.biotech-ecolo.net

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www.maxicook.com

 

 

Le lysozyme est une hydrolase rencontrée dans les sécrétions nasales, lacrymales et salivaires. Elle hydrolyse les polysaccharides des parois des cellules bactériennes. Elle est constituée d'une seule chaîne polypeptidique de 129 acides aminés qui lui donnent par repliement la forme de 'grain de blé gonflé'. Le substrat, un polysaccharide composés d'unités alternées de N-acétylglucosamine (NAG) et d'acide N-acétylmuramique (NAM), se loge dans une crevasse située sur un côté de la molécule. L'enzyme catalyse la rupture de la liaison glycosidique du substrat NAG-NAM (fig. ci contre) unissant les deux résidus.

Les acides aminés Asp52 et Glu35, se trouvant chacun à 0,3 nm de la liaison NAG-NAM, vont servir de donneurs ou d'accepteurs de protons. Asp52 étant dans un environnement polaire, est ionisé au pH optimal du lysozyme (pH 5,0). Glu35, se trouvant dans une région non polaire, n'est pas ionisé. Le mécanisme est le suivant:
Le carboxyle du Glu35 donne un proton coupant la liaison C1-O et libérant NAG. Le Carbocation qui en résulte en C1du NAM est stabilisé par la charge négative d'Asp52. Lcarbocation réagira ensuite avec OH- de l'eau en libérant NAM puis Glu35 est reprotoné et le cycle recommence (catalyse acide).
Dans certaines publications, on peut noter que la liaison du polysaccharide avec l'enzyme se fait par le biais de 14 liaisons hydrogènes contractées par les radicaux libres des acides aminés dont Arg114, Asn37, Asn44, Trp62, Trp63, Asp101 et Gln57

1/ Le fichier du travail porte la référence LYSOZYME EI_moldraw2c76285b (Code 1JEF) montrant l'enzyme liée à un inhibiteur (analogue de substrat. Une copie est disponible sur votre CD (dans le répertoire MOLECULES DATA (CD)). Une fois le fichier (format pdb) est ouvert par RasMol, il donne une image semblable à celle ci contre (après avoir tapé la commande 'set backgound white' dans la fenêtre des commandes RasMol minimisée au bas de votre écran, voir explications):

Pour tourner la molecules dans tous les sens, maintenez enfoncé le bouton gauche de de la souiris tout en la glissant dans un sens ou l'autre.
Pour effectuer un zoom, maintenir enfoncée la touche shift (Î) tout en déplaçant la souris sur la position bouton gauche enfoncé. Pour avoir des informations sur la molecule saisissez 'show information' ou 'show sequence' dans la boite des commandes de RasMol, puis valider par la touche entrée. Pour avoir d'autres information sur la molécule comme le nombre de Cystéines et après avoir visualisé la molécule sous 'sticks', on peut selectionner toutes les cystéines de la molécules en composant dans la fenêtre des commandes:
- select cys

On obtient l'image ci contre (LysozymeCys). Pour sauvegarder cette image (format gif) sur le disque dur de votre ordinateur (avec un nom lysozymeCys.gif), choisir dans 'Export' 'GIF' ou saisissez "write lysozymeCys.gif" dans la boîte des commandes RasMol.

LysozymeCys.gif

Pour étudier le site actif et son environnement, vous pouvez partir du départ en chargeant la molécule et rendre le fond de l'mage blanc au lieu du noir (set background white). On obtient l'image ci dessous:

On peut ensuite sélectionner le faux substrat pour bien situer le site actif de l'enzyme

Pour localiser le ligand (inhibiteur) saisissez 'select ligand' dans la boîte des commandes et valider par la touche entrée. Pour affecter une couleur (ex. rouge) au ligand saisissez encore 'color red' et validez. Pour le distinguer des autres motifs sélectionnez 'ball & stick' dans le menu DISPLAY (Fig. 1).

Pour selectionner les acides aminés Asp52 et Glu35, on saisira successivement dans la fenêtre des commandes RasMol:'select Asp52', 'color yellow' (jaune) (mettre ensuite display ball & stick), 'select Glu35', 'color green' (vert) (mettre ensuite display ball & stick) (Fig. 2)

Fig. 1

Fig. 2

On peut avoir un autre aperçu sur le positionnement du ligand par rapport aux acides aminés de contact du site actif

 

 

On peut mesurer les distances en Angstrum entre le ligand et les deux acides aminés Glu35 et Asp52 en saisissant dans la fenêtre des commandes:
- set picking monitor
suivie de clicks sur les 2 éléments entre lesquels on mesure la distance. Cela donne l'image ci dessous. On n'oublie pas de s'aisir:
- set picking ident
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